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Liquid Handling & Probenvorbereitung
Hochauflösende Methoden, z. B. die massenspektrometrische Proteomik
oder die in vivo-Mikrokopie, sind mittlerweile so präzise, dass eine
optimale Qualität der Proben für valide Ergebnisse unerlässlich ist.
Gerade bei Versuchen mit heterogenen Proben, empfindlichen
Zellbestandteilen oder auch in der Bioproduktion von pharmazeutischen
Produkten ist die Probenvorbereitung ein entscheidender Schritt, der die
Qualität, Zuverlässigkeit und Reproduzierbarkeit der Ergebnisse
maßgeblich beeinflusst.
Johannes F. Buyel stellt in seinem Artikel vor, wie sich mit optimiertem
downstream processing das Potenzial von Pflanzen zur Produktion von
Impfstoffen nutzen lässt.
Melissa Frick und Carla Schmidt zeigen in ihrem Beitrag, wie es eine
Liposomenpräparation in Kombination mit Massenspektrometrie
ermöglicht, verschiedene Phospholipide zu identifizieren und zu
quantifizieren.
Helge Feddersen, Jae Yen Shin und Marc Bramkamp untersuchen die
Position und Dynamik einzelner Moleküle in Bakterien mithilfe der
photoaktivierten Lokalisationsmikroskopie.
Service
Aktuell: High Content Cell Imaging
Während in der klassischen Mikroskopie die Zellen fixiert werden müssen, was Zerstörungen und Artefakte mit sich bringt, können mit Fluoreszenz-basierten Mikroskopiemethoden, z. B. der laser scanning-Mikroskopie, lebende Zellen viel realistischer beobachtet werden. Dabei wird der Erkenntnisgewinn enorm erweitert, da nicht nur eine exakte Lokalisation von spezifischen Proteinen oder Nukleinsäuren in der Zelle bestimmt werden kann, sondern auch deren Bewegungen und Interaktionen in einer intakten, lebenden Zelle. Durch die resolution Evolution, bei der die Auflösungsgrenze drastisch nach unten verschoben wurde, z. B. mit der stochastic optical reconstruction microscopy (dSTORM), können sogar einzelne Moleküle in lebenden Zellen erfasst werden. Jan Schlegel und Markus Sauer zeigen in ihrem Beitrag, wie man mit der 3D-Gitter-Lichtblatt-dStorm-Technologie die Verteilung des Adhäsionsrezeptors CD56 in der Plasmamembran visualisieren kann. Anne Schlaitz wendet die konfokale laser scanning-Methode an, um in lebenden Zellen die Dynamik des ERs während der Mitose zu erforschen. Tobias Becker und Pavel Kielkowski stellen in ihrem Artikel eine Pronukleotid-Sonde für das in situ fluorescence Imaging zur Identifizierung und Beobachtung von AMPylierten Proteinen vor. Hintergrundbild: Sich teilende HeLa-Zellen unter dem Lichtmikroskop. Chromosomen im Zellnukleus (lila), Mikrotubuli im Zellskelett (Tubulin, grün) und Aktin (rot) sind erkennbar. Bild: Kevin Mackenzie, University of Aberdeen, Wellcome Collection, https://wellcomecollection.org/works/vjq5c26rCC unter der Lizenz BY 4.0, https://creativecommons.org/licenses/by/4.0.
Nukleinsäure-Extraktion im Hochdurchsatz
Weitere Informationen unter: www.himedialabs.com