Liquid Handling & Probenvorbereitung

Hochauflösende Methoden, z. B. die massenspektrometrische Proteomik oder die in vivo-Mikrokopie, sind mittlerweile so präzise, dass eine optimale Qualität der Proben für valide Ergebnisse unerlässlich ist. Gerade bei Versuchen mit heterogenen Proben, empfindlichen Zellbestandteilen oder auch in der Bioproduktion von pharmazeutischen Produkten ist die Probenvorbereitung ein entscheidender Schritt, der die Qualität, Zuverlässigkeit und Reproduzierbarkeit der Ergebnisse maßgeblich beeinflusst.
Johannes F. Buyel stellt in seinem Artikel vor, wie sich mit optimiertem downstream processing das Potenzial von Pflanzen zur Produktion von Impfstoffen nutzen lässt. Melissa Frick und Carla Schmidt zeigen in ihrem Beitrag, wie es eine Liposomenpräparation in Kombination mit Massenspektrometrie ermöglicht, verschiedene Phospholipide zu identifizieren und zu quantifizieren. Helge Feddersen, Jae Yen Shin und Marc Bramkamp untersuchen die Position und Dynamik einzelner Moleküle in Bakterien mithilfe der photoaktivierten Lokalisationsmikroskopie.

Hitze stabilisiert Malariaimpfstoffkandidaten in komplexen Proteinextrakten Massenspektrometrische Analyse von Phospholipiden aus Liposomen Einzelmolekül-Lokalisationsmikroskopie mit mikrobiellen Proben Herstellernachweis

Termine

  • 20.01.2021 - 21.01.2021

    86. Interantionale Grüne Woche Berlin
    Messe wird virtuell durchgeführt

  • 26.01.2021 - 28.01.2021

    Advances in Chemical Biology
    Konferenz wird virtuell durchgeführt

  • 29.01.2021 - 30.01.2021

    9. Norddeutsche Hormon- und Stoffwechseltage
    Konferenz wird virtuell durchgeführt

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Aktuell: High Content Cell Imaging

Während in der klassischen Mikroskopie die Zellen fixiert werden müssen, was Zerstörungen und Artefakte mit sich bringt, können mit Fluoreszenz-basierten Mikroskopiemethoden, z. B. der laser scanning-Mikroskopie, lebende Zellen viel realistischer beobachtet werden. Dabei wird der Erkenntnisgewinn enorm erweitert, da nicht nur eine exakte Lokalisation von spezifischen Proteinen oder Nukleinsäuren in der Zelle bestimmt werden kann, sondern auch deren Bewegungen und Interaktionen in einer intakten, lebenden Zelle. Durch die resolution Evolution, bei der die Auflösungsgrenze drastisch nach unten verschoben wurde, z. B. mit der stochastic optical reconstruction microscopy (dSTORM), können sogar einzelne Moleküle in lebenden Zellen erfasst werden. Jan Schlegel und Markus Sauer zeigen in ihrem Beitrag, wie man mit der 3D-Gitter-Lichtblatt-dStorm-Technologie die Verteilung des Adhäsionsrezeptors CD56 in der Plasmamembran visualisieren kann. Anne Schlaitz wendet die konfokale laser scanning-Methode an, um in lebenden Zellen die Dynamik des ERs während der Mitose zu erforschen. Tobias Becker und Pavel Kielkowski stellen in ihrem Artikel eine Pronukleotid-Sonde für das in situ fluorescence Imaging zur Identifizierung und Beobachtung von AMPylierten Proteinen vor. Hintergrundbild: Sich teilende HeLa-Zellen unter dem Lichtmikroskop. Chromosomen im Zellnukleus (lila), Mikrotubuli im Zellskelett (Tubulin, grün) und Aktin (rot) sind erkennbar. Bild: Kevin Mackenzie, University of Aberdeen, Wellcome Collection, https://wellcomecollection.org/works/vjq5c26rCC unter der Lizenz BY 4.0, https://creativecommons.org/licenses/by/4.0.

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Nukleinsäure-Extraktion im Hochdurchsatz

Weitere Informationen unter: www.himedialabs.com

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Aktuell: Mikrotiterplatten

Hier finden Sie alle Marktübersichten aus den Jahren 2016 bis 2020. Zuletzt erschienen ist: Mikrotiterplatten(07/20).

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