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Laborautomation
Die Vorstellung, Arbeitsprozesse autonom, ohne direkte menschliche
Arbeitskraft auszuführen, beschäftigte bereits Aristoteles. Heute sind
vollautomatische Produktionsstraßen, Roboter und Fertigungsanlagen aus
der Industrie nicht mehr wegzudenken. Auch in der Forschung gewinnt die
Automation zunehmend an Bedeutung. Experimentelle Ansätze können so
unter standardisierten Bedingungen mit minimierten Fehlerquellen
wiederholt und Proben mit einer ungeahnten Durchsatzleistung analysiert
werden.
Alina Burmeister, Fabienne Hilgers und Alexander Grünberger stellen ein
mikrofluidisches Kultivierungssystem vor, dass mit automatisierter
Lebendzellmikroskopie kombiniert werden kann.
Kerstin Thurow und Thomas Roddelkopf beschreiben
Automationslösungen für Analytiklabore, die den Aufwand manueller
Probenvorbereitung reduzieren.
Torsten Kroll, Mubashir Ahmad, Aspasia Ploubidou und Jan Tuckermann
suchen Modulatoren der Osteoblastendifferenzierung mithilfe eines RNAi-
Screenings im Hochdurchsatz.
Service
Aktuell: High Content Cell Imaging
Während in der klassischen Mikroskopie die Zellen fixiert werden müssen, was Zerstörungen und Artefakte mit sich bringt, können mit Fluoreszenz-basierten Mikroskopiemethoden, z. B. der laser scanning-Mikroskopie, lebende Zellen viel realistischer beobachtet werden. Dabei wird der Erkenntnisgewinn enorm erweitert, da nicht nur eine exakte Lokalisation von spezifischen Proteinen oder Nukleinsäuren in der Zelle bestimmt werden kann, sondern auch deren Bewegungen und Interaktionen in einer intakten, lebenden Zelle. Durch die resolution Evolution, bei der die Auflösungsgrenze drastisch nach unten verschoben wurde, z. B. mit der stochastic optical reconstruction microscopy (dSTORM), können sogar einzelne Moleküle in lebenden Zellen erfasst werden. Jan Schlegel und Markus Sauer zeigen in ihrem Beitrag, wie man mit der 3D-Gitter-Lichtblatt-dStorm-Technologie die Verteilung des Adhäsionsrezeptors CD56 in der Plasmamembran visualisieren kann. Anne Schlaitz wendet die konfokale laser scanning-Methode an, um in lebenden Zellen die Dynamik des ERs während der Mitose zu erforschen. Tobias Becker und Pavel Kielkowski stellen in ihrem Artikel eine Pronukleotid-Sonde für das in situ fluorescence Imaging zur Identifizierung und Beobachtung von AMPylierten Proteinen vor. Hintergrundbild: Sich teilende HeLa-Zellen unter dem Lichtmikroskop. Chromosomen im Zellnukleus (lila), Mikrotubuli im Zellskelett (Tubulin, grün) und Aktin (rot) sind erkennbar. Bild: Kevin Mackenzie, University of Aberdeen, Wellcome Collection, https://wellcomecollection.org/works/vjq5c26rCC unter der Lizenz BY 4.0, https://creativecommons.org/licenses/by/4.0.
Nukleinsäure-Extraktion im Hochdurchsatz
Weitere Informationen unter: www.himedialabs.com